常见的脑出血动物模型实验方法有哪些？这些方法又各有什么优缺点？

关于脑出血的动物造模实验有很多，那常见的脑出血动物模型实验方法有哪些？又各自有什么优势劣势呢？我们又该怎么选择呢？今天就一起和动物模型实验外包公司湘元生物一起来了解学习一下吧！

这里简单说3种脑出血动物模型的造模方法，分别是胶原酶注射脑出血模型、自体血注入脑出血模型和自发性脑出血模型。

胶原酶注射脑出血模型

造模方法：SD 大鼠麻醉消毒后固定，颅骨转孔，使用立体定位仪定位大鼠脑一侧尾状核，将微量注射器针头插入脑组织尾状核，分别分组注入0.5μL胶原酶，连续观察10 min后即可见发生出血，且出血后症状明显、持续时间较长。

这种造模分方法做起来，会相对比较简单、快捷，而且成功率较高，重复性好；但缺点也很明显，就是这种动物模型实验造模方法，与人类脑出血的病理过程仍有区别，并且，胶原酶对脑组织有细胞毒性作用，可严重损伤神经功能及血脑屏障，有一定的局限性。

自体血注入脑出血模型

造模方法：腹腔麻醉后，将其固定于立体定向仪上。尤其注意耳针的固定，并尽可能使头部的表面与立体定向仪的水平面相平行。使用1-2mm牙科钻在该处钻孔，并防止周围软组织的卷入，有落空感后即停止。局部消毒后断尾，待血液自行流出，不挤压，以防止混入组织液。抽吸血液10ul，之前用生理盐水润洗注射器内壁。将注射器固定于立体定向仪，进入小鼠脑深部。40％自体血在10分钟内缓慢注入，停留5分钟，剩余60％自体血在之后15分钟内缓慢注入。

这种造模分方法与人脑出血后演进过程基本相似，可用于研究脑水肿机制及临床药物作用机制。缺点就是，血液注射过程中不可避免地有反溢现象和血液凝固堵塞针道的问题，血肿形态和大小重复性差。

自发性脑出血模型

自发性脑出血模型主要有两种:一种是以血压表型为标志近交培育而成的自发性高血压大鼠，其病理生理与临床脑出血很接近,但由于其在来源、饲养等方面与普通大鼠相比具有很多不便,使其应用受到很大限制。另一种是肾性高血压大鼠,以内径0.25~0.3mm银夹单侧或双侧肾动脉狭窄法(即双肾双夹法)造成肾性高血压。用双肾双夹法造成的大鼠肾性高血压,术后7d血压开始上升,3周后可使平均动脉收缩压升到150mmHg,在肾动脉狭窄后10周发生的肾性高血压引起的脑血管损伤,主要为纤维素样坏死、透明样变性和血管壁增生或小血管壁增厚,出现与高血压极为相似的血管、微血管病变。

动物模型实验外包公司湘元生物觉得，这种动物模型实验造模方法是目前研究成人型脑出血较理想的方法之一了。此模型将高血压与脑卒中结合，可以很大程度地模拟人脑卒中病理。但这个动物模型实验造模方法缺点也很明显，就是和所有自发性动物模型一样，有着动物培养成本高昂，繁育时间较长等等多方面的限制。

但是，无法避免的，无论哪种方法建立动物脑出血模型均存在各自的优缺点，大家根据各自的实验需求选择更合适的即可，如果大家对脑出血模型造模方法还有疑问的，可直接咨询湖南长沙动物模型实验外包公司湘元生物客服，24小时在线免费咨询！